Révéler le potentiel thérapeutique et antimicrobien de l’huile d’amande de graine de Prunus armeniaca L.
Référence : International Journal of Food Science 2024. — PMID 39544277 · DOI 10.1155/2024/5589506 Type : etude in vitro · Plante : Abricotier · Propriété → Antimicrobien Accès : ⭐ libre (open access) → texte intégral traduit Fidélité : traduction intégrale et fidèle du texte des auteurs. Appels [n] omis ; figures/tableaux « [ ] ».
Résumé
Prunus armeniaca L. (abricot amer) est un arbre fruitier à abricots classé sur la base du goût amer de l’amande de sa graine. Dans cette étude, le potentiel fonctionnel, médicinal et thérapeutique de l’huile d’amande de graine d’abricot amer (BASKO, bitter apricot seed kernel oil) a été évalué. Le criblage qualitatif de la BASKO a été réalisé au moyen de méthodologies standard. Le profil chimique de l’huile a été analysé à l’aide de la spectroscopie infrarouge à transformée de Fourier (FTIR) ainsi que de la chromatographie en phase gazeuse couplée à la spectrométrie de masse (GC-MS). Les résultats ont révélé la présence de différents constituants phytochimiques comprenant des stéroïdes, des flavonoïdes, des terpénoïdes, des alcaloïdes et des glycosides cardiaques. L’activité antioxydante de l’huile a été déterminée par un test d’inhibition du radical 2,2-diphényl-1-picrylhydrazyle (DPPH). Les teneurs totales en composés phénoliques et en flavonoïdes étaient respectivement de 10,6 ± 1,32 mg EAG/g et 4,75 ± 0,11 mg EQ/g. Une inhibition du DPPH de 89,5 % a été atteinte à 1000 μg/mL de BASKO, avec une CI50 = 90,44 μg/mL (83,47–96,67 μg/mL avec IC à 95 %). Le potentiel antimicrobien de la BASKO a révélé l’inhibition d’Escherichia coli (20,3 ± 2,08 mm), Salmonella typhi (19,3 ± 2,51 mm), Klebsiella pneumoniae (16,6 ± 1,52 mm), Pseudomonas aeruginosa (17 ± 2 mm) et Staphylococcus aureus (25 ± 1,01 mm). La concentration minimale inhibitrice (CMI) était de 250 μL/mL pour K. pneumoniae, S. typhi, P. aeruginosa et S. aureus, tandis qu’elle était de 62,5 μL/mL pour E. coli. De plus, la BASKO a montré un potentiel antifongique contre Trichophyton tonsurans (77,3 ± 2,08 %), Epidermophyton floccosum (69,6 ± 3,51 %), Aspergillus niger (74,3 ± 2,56 %), Aspergillus flavus (90 ± 3 %) et Mucor mucedo (78,3 ± 2,51 %). L’activité antileishmanienne de l’huile a été évaluée contre Leishmania major par test MTT, et une valeur de CI50 de 89,75 μg/mL a été observée. L’étude a révélé que la BASKO est une bonne source de composés biologiquement actifs à utiliser comme agents fonctionnels, thérapeutiques et antimicrobiens dans les produits alimentaires et pharmaceutiques.
1. Introduction
Prunus armeniaca, communément appelé abricot, est cultivé dans les régions tempérées et compte parmi les fruits les plus connus produits à l’échelle mondiale, en particulier en Asie occidentale et centrale, où la Turquie et l’Ouzbékistan dominent la production mondiale d’abricots. Le Pakistan occupe la sixième position pour sa production, et il est surtout cultivé dans différentes zones des provinces du Khyber Pakhtunkhwa et du Baloutchistan. L’abricot est classé en trois catégories selon le goût de sa graine : abricot sucré, abricot partiellement amer et abricot amer. La famille des Rosacées et le genre Prunus incluent l’abricot sauvage, également connu sous le nom d’abricot amer. Le fruit mûr, issu de l’arbre Prunus armeniaca, est consommé aussi bien frais que séché. Son amande contient une huile jaune pâle, à hauteur d’environ 47 %, avec un indice de saponification compris entre 187,3 et 199 et un indice de réfraction compris entre 1,464 et 1,480. Son huile possède de nombreuses propriétés thérapeutiques comprenant des effets antioxydant, antitumoral, antifongique, antiasthmatique, antiviral, antibactérien, antileishmanien, anti-inflammatoire et insecticide. En outre, elle est utilisée dans les industries du cuir, du biodiesel, pharmaceutique, alimentaire, de la boulangerie et des cosmétiques. Elle peut être utilisée comme aliment fonctionnel en raison de ses propres bienfaits pour la santé.
Une nouvelle voie pour l’analyse des composants alimentaires a été rendue possible par les effets protecteurs des antioxydants alimentaires face aux maladies dégénératives humaines. Comme l’huile d’amande de graine d’abricot amer, sa coque et ses feuilles présentent elles aussi des attributs médicinaux tels que des effets antioxydant, anticancéreux, antiasthmatique, antimicrobien et anti-inflammatoire. L’abricot du Japon est utilisé dans une boisson particulière pour la prévention et le traitement de la prolifération des cellules cancéreuses. Les flavonoïdes, la galangine, l’acide p-coumarique, la chrysine, l’acide benzoïque, la pinocembrine et les acides caféiques présents dans les graines d’abricot se sont révélés dotés d’une action antivirale contre le HSV-1. Différents constituants biologiquement importants tels que les flavonoïdes, les vitamines, le stilbène, les composés phénoliques, les alcaloïdes, les bétalaïnes, les tanins, les amines et les métabolites secondaires sont responsables des activités fonctionnelles. La littérature atteste que les composés phénoliques sont des antioxydants naturels et se trouvent en abondance dans les légumes, les fruits, les graines, la pulpe, la peau, l’amande et l’huile.
L’abricot possède une valeur nutritionnelle considérable, et sa composition révèle que le fruit de l’abricot est une bonne source de minéraux (fer, potassium, calcium, magnésium, sodium, phosphore, cuivre, sélénium et zinc), de vitamines A et C, de fibres, de thiamine, d’acide pantothénique, de riboflavine et de niacine, qui sont utilisés à de nombreuses fins liées à la santé publique. Il a été rapporté que l’huile d’abricot amer fournit des vitamines, des acides gras et des composés phénoliques, qui jouent un rôle vital dans l’activité antioxydante.
Les huiles essentielles extraites de fruits, d’herbes et de légumes contiennent plusieurs composés biologiquement actifs bénéfiques qui présentent un potentiel contre le cancer, la diarrhée, les nausées, la constipation, le diabète, les infections rénales, les troubles nerveux, les troubles digestifs, l’inflammation et les troubles cardiaques. Les antioxydants ont été utilisés comme agents hépatoprotecteurs, protecteurs du système nerveux, néphroprotecteurs, gastroprotecteurs, anti-inflammatoires et antivieillissement.
Les composés phénoliques, les flavonoïdes, les alcaloïdes et les tanins comptent parmi les composés bioactifs substantiels présents dans l’amande d’abricot, et celle-ci est utilisée comme médecine traditionnelle depuis des lustres. L’huile d’abricot amer présente un intérêt industriel et possède une capacité d’élévation active comme les autres huiles essentielles, sans nuire à l’environnement. L’huile dérivée de sources végétales, comme les huiles essentielles, est considérée comme respectueuse de l’environnement, sans implications négatives pour la santé humaine, d’où sa demande croissante dans divers secteurs, notamment les cosmétiques, l’alimentation et la pharmacie. L’huile de graine d’abricot amer est largement utilisée pour le traitement de la santé et des infections cutanées en tant que médecine traditionnelle. Peu de travaux ont été menés sur l’exploration de la présence de composants bioactifs et l’évaluation de leur potentiel médicinal et applicatif dans différentes applications industrielles modernes. L’étude actuelle a donc été conçue pour évaluer le potentiel fonctionnel et thérapeutique de l’huile locale de graine d’abricot amer, ainsi que pour déterminer les composants nutritionnels et bioactifs qu’elle contient.
2. Matériel et méthodes
2.1. Collecte des échantillons
Les graines de la variété sauvage d’abricot amer ont été obtenues à Swat, province du Khyber Pakhtunkhwa au Pakistan. Les amandes ont été collectées après retrait des coques dures des graines. Les amandes collectées ont été séchées dans une étuve à air chaud à 40 °C pendant 48 h. La plante et la graine ont été identifiées par le taxonomiste Dr Zahid Ullah, professeur associé au Centre de sciences végétales et de biodiversité de l’Université de Swat. Le spécimen de référence de la plante a été déposé à l’herbier du Centre de sciences végétales et de biodiversité de l’Université de Swat, « Swat », numéro de catalogue SWAT001380. Des échantillons de la graine ont également été conservés au Laboratoire de microbiologie alimentaire et de technologie des bioprocédés de l’Université du Baloutchistan, pour archivage.
2.2. Extraction de l’huile
Un appareil de Soxhlet a été utilisé pour extraire l’huile en suivant Tesfaye et Tefera avec de légères modifications. Les graines d’abricot amer ont été broyées en poudre, et 50 g de l’échantillon ont été chargés dans la cartouche et placés dans l’extracteur de Soxhlet. L’éthanol a été utilisé comme solvant d’extraction, et l’huile a été extraite pendant 6 h. L’éthanol a ensuite été séparé de l’huile en vue d’une utilisation ultérieure.
2.3. Analyse qualitative des phytochimiques
Les analyses qualitatives des phytochimiques, à savoir les flavonoïdes, les alcaloïdes, les tanins, les phlobatanins, les saponines, les terpénoïdes, les stéroïdes, les glycosides cardiaques, les coumarines, les quinones et les anthraquinones, ont été réalisées par des méthodes standard.
2.4. Détermination de la teneur totale en composés phénoliques (TPC) et de la teneur totale en flavonoïdes (TFC)
La TPC et la TFC de la BASKO ont été déterminées par des méthodes colorimétriques standard. Pour la TPC, l’acide gallique a été utilisé comme étalon de référence, et les résultats ont été exprimés en mg d’équivalent acide gallique (EAG) par gramme d’échantillon. De même, la quercétine a été utilisée comme étalon de référence pour l’estimation de la TFC, et les résultats ont été exprimés en milligrammes d’équivalent quercétine (EQ) par gramme.
2.5. Activité antioxydante
L’activité de piégeage des radicaux libres a été évaluée à l’aide du test au 2,2-diphényl-1-picrylhydrazyle (DPPH). L’éthanol a été utilisé pour préparer la solution de réactif DPPH. La solution de DPPH (2 mL) a été mélangée à 0,5 mL de BASKO et maintenue à température ambiante pendant 30 min. La solution de DPPH a été utilisée comme témoin, et la vitamine C comme étalon de référence. L’absorbance a été enregistrée à 517 nm après l’incubation. Le test a été réalisé en triplicat, et l’activité de piégeage a été calculée selon la formule ci-dessous : Pourcentage de piégeage = (A0 − A1) / A0 × 100
Note : A0 est l’absorbance du témoin et A1 l’absorbance de l’échantillon.
Les valeurs de CI50 ont été déterminées en utilisant différentes concentrations d’huile pour piéger 50 % de l’activité radicalaire libre du DPPH. La courbe de relation a été établie en traçant les activités de piégeage en fonction des différentes concentrations d’huile, exprimées en microgrammes par millilitre.
2.6. Spectroscopie infrarouge à transformée de Fourier
L’empreinte chimique de la BASKO a été déterminée par spectromètre FTIR en enregistrant 32 balayages à une résolution de 4 cm⁻¹ (Nicolet, Avatar 360). Les spectres des échantillons ont été ajustés dans la plage de 250 à 4500 cm⁻¹.
2.7. Chromatographie en phase gazeuse et spectrométrie de masse
Le profil chimique détaillé de la BASKO a été analysé par GC-MS (modèle Perkin Elmer Clarus 500, États-Unis) équipé d’une colonne capillaire en silice fondue VF-5 MS (30 m × 0,25 mm, épaisseur de film 0,25 mm). La BASKO a été dissoute dans du n-hexane à 70 % (1:10, p/v) et soumise à l’analyse GC-MS pour identifier les composants chimiques. La température de l’injecteur a été programmée pour passer de 60° pendant 5 min à 230° pendant 45 min, la température de l’injecteur étant réglée à 230°. Les temps initial et final étaient respectivement de 2:50 et 72:00 min. Le pourcentage d’égalisation de l’aire des pics a été utilisé pour exprimer le pourcentage relatif des composants chimiques dans la BASKO.
2.8. Activité antibactérienne
La gélose Mueller-Hinton (MHA) a été préparée et stérilisée par autoclavage. La MHA a été coulée dans des boîtes de Pétri stériles et laissée à solidifier. Un tapis des cultures bactériennes cibles, à savoir Escherichia coli, Salmonella typhi, Staphylococcus aureus, Klebsiella pneumoniae et Pseudomonas aeruginosa (ajusté à 1 × 10⁸ UFC/mL par comparaison avec le standard 0,5 de McFarland), a été réalisé à la surface des plaques de MHA à l’aide d’écouvillons stériles. Un emporte-pièce de 6 mm a été utilisé pour créer des puits dans les plaques de gélose, et 250 μL de BASKO ont été pipetés dans chaque puits des plaques séparément. Le test a été mené avec des témoins positif et négatif, respectivement la doxycycline (un médicament antimicrobien) et un milieu non inoculé. Les boîtes de Pétri inoculées ont été incubées à 37 °C pendant 24 h. Après incubation, les résultats ont été interprétés en évaluant le diamètre des zones d’inhibition autour du puits.
2.9. Concentration minimale inhibitrice et concentration minimale bactéricide (CMI et CMB)
Une procédure de dilution au double a été utilisée pour analyser la CMI et la CMB de la BASKO dans le bouillon Mueller-Hinton pour les espèces bactériennes à Gram négatif et à Gram positif. Le rapport de dilution de l’huile dans le milieu de test était de 1000, 500, 250, 125 et 62,5 μL/mL. La plaque à 96 puits a été remplie avec 100 μL de bouillon de culture contenant les différentes dilutions ainsi que les témoins. La concentration la plus faible ayant stoppé la croissance bactérienne après 24–48 h à 37 °C a été considérée comme la CMI. Le bouillon du puits présentant différentes concentrations a été repiqué pour la croissance bactérienne selon la procédure de dénombrement standard sur plaque (SPC), en utilisant des plaques de gélose nutritive fraîchement préparées et incubées à 37 °C pendant 24 h. L’apparition d’aucune croissance visible sur la plaque de milieu de culture après incubation a été considérée comme la CMB. Les expériences ont été menées en triplicat pour chaque essai.
2.10. Activité antifongique
L’activité antifongique de l’huile a été déterminée en mélangeant 2 mL de BASKO avec 1 mL de DMSO, puis en ajoutant le mélange dans un flacon contenant 24 mL de gélose dextrosée de Sabouraud préstérilisée, coulée ensuite sur la boîte de Pétri stérile. Ensuite, des puits de 6 mm de diamètre ont été soigneusement creusés dans les plaques de gélose solidifiée à l’aide d’un emporte-pièce et remplis avec l’inoculum fongique cible. Le fluconazole a été utilisé comme médicament de référence, tandis qu’un milieu exempt d’huile et inoculé avec l’espèce fongique cible a servi de témoin positif. La puissance antifongique de la BASKO a été observée contre Mucor mucedo, Aspergillus niger, Aspergillus flavus, Epidermophyton floccosum et Trichophyton tonsurans. Le calcul de l’inhibition de la croissance a été mesuré par rapport à la croissance des champignons cibles dans les plaques témoins après 72 h d’incubation à 35 °C via l’équation suivante. Le fluconazole a été utilisé comme étalon. % d’inhibition de la croissance fongique : % Inhibition = 100 − (croissance linéaire dans le test en mm / croissance linéaire dans le témoin en mm) × 100
2.11. Test antileishmanien (in vitro)
Les promastigotes de Leishmania major ont été prélevés dans la culture précédemment isolée et conservée au Laboratoire de microbiologie alimentaire et de bioprocédés, Département de microbiologie, Université du Baloutchistan, Quetta. Shaheen et al. ont été suivis avec de légères modifications pour déterminer le potentiel antileishmanien de l’huile. Les promastigotes leishmaniens conservés ont été rafraîchis dans un milieu de culture frais. Le milieu biphasique NNN (Novy–Mac–Neal–Nicolle) additionné de pénicilline et de streptomycine a été utilisé dans l’étude pour la croissance leishmanienne. Des tubes à essai ont été remplis de 500 μL de milieu NNN, tandis que la BASKO (1000 μL) a été versée dans le premier tube à essai, puis diluée en série au double (500, 250, 125, 62,5 et 31,2 μL) et étiquetée en conséquence. Ensuite, 20 μL d’organisme rafraîchi et 50 μL de chaque dilution ont été ajoutés dans une plaque à 96 puits et incubés à 37 °C pendant 24 h, la même procédure étant appliquée pour l’étalon. Le glucantime a été utilisé comme médicament étalon, le milieu sans inoculum comme témoin négatif, et le milieu exempt d’huile et inoculé avec les organismes comme témoin positif. Après incubation, 20 μL de solution mère de sel de nitro-bleu de tétrazolium (NBT) ont été pipetés dans une plaque à 96 puits et incubés à nouveau à 37 °C pendant 2 h. L’absorbance a été enregistrée à 630 nm dans un lecteur ELISA, et les résultats ont été interprétés via les équations suivantes : % de viabilité cellulaire = (A630 de l’échantillon test / A630 du témoin) × 100 ; % d’inhibition = 100 − % de viabilité
2.12. Analyse statistique
Toutes les expériences ont été menées en triplicat, et les résultats sont présentés sous forme de valeurs moyennes avec écart-type (±ET) à partir de trois réplicats. Pour identifier les différences significatives entre groupes (p < 0,05), une analyse de variance à un facteur (ANOVA) et des tests de Tukey ont été réalisés à l’aide du logiciel statistique SPSS (SPSS version 23.0). Pour l’estimation de la CI50, l’analyse des données a été effectuée avec GraphPad Prism version 9 (San Diego, États-Unis).
3. Résultats
3.1. Phytochimiques
Les phytochimiques sont des composés bénéfiques à potentiel fonctionnel, et des techniques standard ont été utilisées pour analyser la présence de phytochimiques dans la BASKO. L’application de composés médicinaux issus de sources naturelles a considérablement augmenté dans les industries de la santé et pharmaceutique. Les résultats de la présente étude ont démontré la présence de différents phytochimiques importants, à savoir glycoside cardiaque, coumarines, stéroïdes, alcaloïdes, flavonoïdes, quinones et terpénoïdes dans la BASKO, comme décrit dans le Tableau 1. [ ]
3.2. TPC et TFC
Les composés phénoliques et flavonoïdes possèdent une grande importance médicinale et sont considérés comme bons pour la consommation humaine et animale. Les quantités de TPC et de TFC dans l’huile ont été calculées respectivement à 10,6 ± 1,32 mg EAG/g et 4,75 ± 0,11 mg EQ/g.
3.3. Test d’inhibition du DPPH
Il a été noté que l’activité de piégeage du radical DPPH de la BASKO augmentait avec l’augmentation de la concentration en huile [ ], et à la concentration test la plus élevée (1000 μg/mL), une inhibition du DPPH de 89,5 % a été observée. La valeur de CI50 indiquant la concentration d’échantillon requise pour 50 % d’inhibition du DPPH a été calculée par la méthode d’ajustement de courbe par régression non linéaire et a été observée à 90,44 μg/mL (83,47–96,67 μg/mL avec IC à 95 %). L’allure de la courbe dose-réponse a été prédite par extrapolation des points de données au-delà des valeurs expérimentales à l’aide de la méthode d’ajustement de courbe dose-réponse à pente variable.
3.4. Spectroscopie infrarouge à transformée de Fourier
La technique FTIR a été utilisée pour détecter les groupes fonctionnels présents dans la BASKO. Le classement des groupes fonctionnels a été facilité par l’étirement, le balancement et la flexion des pics FTIR (Tableau 2). [ ] Les pics ont été interprétés en groupes fonctionnels conformément à la référence citée. L’étirement C-H a indiqué l’asymétrie du méthylène aux pics 2973–2833 cm⁻¹, tandis que les cycles aromatiques, le carbonate d’alkyle et la flexion des esters ont été déterminés aux pics 1750–1725 cm⁻¹. Les composés multiples (cycle aromatique, méthyle asymétrique, ion carbonate et méthylène) ont été indiqués aux pics 1490–1410 cm⁻¹. Certains composés, dont le sulfate organique, le nitrocarbone aliphatique, le méthyle et l’ion nitrite, ont été mis en évidence par vibration de flexion et d’étirement aux pics 399–1310 cm⁻¹. L’étirement des pics 1240–1190 cm⁻¹ a été attribué au phosphate aromatique et à l’éther. Les pics à 1190–1080 cm⁻¹ en étirement ont été attribués au sulfonate ainsi qu’aux amines secondaire, tertiaire et tétra. En outre, une forte variation d’étirements et de flexions des signaux a été observée aux pics 1150–1000 cm⁻¹, indiquant un composé fluoré aliphatique, un hydrocarbure aromatique, l’ion phosphate, un siloxane organique, l’ion silicate, un éther cyclique et alkyl-substitué, l’ion sulfate et le silicium. L’étirement des pics 1055–1000 cm⁻¹ a démontré la présence d’un composé fluoré aliphatique, d’un phosphate aliphatique, d’un cycle cyclohexane, du silicium, d’une amine primaire et de l’ion silicate. Les pics 800–700 cm⁻¹ ont été attribués aux hydrocarbures aromatiques, aux groupes chloro aliphatiques et au méthylène, tandis que les pics 500–430 cm⁻¹ ont décrit les aryles et les polysulfures.
3.5. Chromatographie en phase gazeuse–spectrométrie de masse
L’analyse GC-MS a révélé que différents acides gras sont présents dans la BASKO, dont les oméga-6 et oméga-9, l’acide oléique (acide gras monoinsaturé) et l’acide palmitique (acide gras saturé). Outre ceux-ci, la BASKO contenait les acides gras suivants : acide stéarique (acide gras saturé), acide margarique (acide gras saturé cristallin), acide caprylique (acide gras saturé), acide adipique (acide gras à chaîne moyenne), acide butanoïque (acide gras saturé à chaîne courte), acide caproïque (acide gras saturé) et acide valérique (acide gras à chaîne droite). Outre les acides gras, de nombreux autres composés bénéfiques y ont été trouvés, tels que des composés aromatiques, des dérivés du benzène, des phénols, des dérivés éthyle et méthyle, des aldéhydes, des produits de naphtalène, l’acide nicotinique (vitamine B), du pyrrole, des cétones, de l’alcool, des dérivés du silicium et des sulfures. En outre, plusieurs acides comprenant l’acide salicylique, l’acide benzoïque, l’acide cinnamique, l’acide butanoïque, l’acide propanoïque, l’acide fumarique, l’acide malonique, l’acide acétique, l’acide hexynoïque et de nombreux autres composés sont présents dans la BASKO, comme indiqué dans le Tableau 3. [ ]
3.6. Activité antibactérienne
La BASKO a montré une bonne activité antibactérienne contre S. aureus (25 ± 1,01 mm), E. coli (20,3 ± 2,08 mm) et S. typhi (19,3 ± 2,51 mm) par rapport à P. aeruginosa (17 ± 2 mm) et K. pneumoniae (16,6 ± 1,52 mm). Les résultats montrent une bonne puissance de l’huile contre les espèces bactériennes cibles (Tableau 4). [ ]
3.7. CMI et CMB
Dans la présente étude, la BASKO s’est révélée très puissante contre les espèces bactériennes cibles. La valeur de CMI enregistrée était de 250 μL/mL pour K. pneumoniae, S. typhi, P. aeruginosa et S. aureus, tandis qu’elle était de 62,5 μL/mL pour E. coli. La CMB de la BASKO a été notée à la concentration de 62,5 μL/mL sur E. coli et à la concentration de 250 μL/mL sur S. aureus et S. typhi, tandis qu’elle a inhibé la croissance de K. pneumoniae et P. aeruginosa à 250 μL/mL en exerçant un effet bactériostatique (Tableau 5). [ ]
3.8. Activité antifongique
E. floccosum, M. mucedo, A. niger, T. tonsurans et A. flavus ont été utilisés comme organismes tests cibles pour déterminer l’activité antifongique de l’huile en mesurant le pourcentage d’inhibition de la croissance. La BASKO a été efficace contre toutes les espèces fongiques, et des pourcentages d’inhibition de 90 ± 3 %, 77,3 ± 2,08 %, 69,6 ± 3,51 %, 74,3 ± 2,56 % et 78,3 ± 2,51 % ont été observés respectivement contre A. flavus, T. tonsurans, E. floccosum, A. niger et M. mucedo (Tableau 6). [ ] L’activité antifongique du médicament étalon fluconazole était légèrement supérieure à celle de l’huile.
3.9. Activité antileishmanienne
L’étude a montré que L. major est sensible à la BASKO avec une CI50 = 89,75 μg/mL avec un intervalle de confiance à 95 % (83,72–95,11 μg/mL), tandis que le médicament étalon glucantime avait une CI50 = 0,099 μg/mL avec un intervalle de confiance à 95 % (0,085–0,11 μg/mL) (Figure 2). [ ]
4. Discussion
Un examen qualitatif des phytochimiques est nécessaire pour identifier les constituants bioactifs des plantes et des produits végétaux. En raison des processus métaboliques survenant aux différents stades de la croissance d’une plante, des phytochimiques tels que tanins, terpénoïdes, glycosides et quinones sont produits. Ces produits, tels que coumarines, alcaloïdes, terpénoïdes, flavonoïdes et composés phénoliques, ont été détectés dans notre étude, et certains de ces biocomposants ont été rapportés par Shaheen et al. dans l’extrait de feuille d’abricot et l’huile. Il a été rapporté que le potentiel antioxydant et antibactérien peut être directement associé à la présence d’alcaloïdes, de composés phénoliques et de flavonoïdes.
Les espèces de Prunus sont abondantes en flavonoïdes, composés phénoliques et autres composants bioactifs. Kasapoğlu, Kahraman et Tornuk ont rapporté une TFC et une TPC de 1,015 mg EC/g et 1,206 mg EAG/g dans l’extrait de marc d’abricot, tandis que Joujou et al. ont rapporté la présence de flavonoïdes et de composés phénoliques dans différentes graines, dont l’abricot amer, à des concentrations variables. Ces résultats concordent avec notre étude des constituants bioactifs. Nous avons obtenu des composants TPC légèrement plus élevés (10,6 ± 1,32 mg EAG/g) par rapport à ce qui avait été rapporté antérieurement (9,8 EAG/g) dans une étude similaire. La quantité de TFC rapportée par Juhaimi et al. était plus élevée dans l’amande d’abricot torréfiée (17,33 mg EC/g), l’abricot sucré (0,468 mg EQU/g) et l’abricot amer (8,099 mg EQU/g) par rapport à nos résultats.
L’activité de piégeage des radicaux de la BASKO était de 64 %, plus faible (79,85 %) que celle rapportée par Kasapoğlu, Kahraman et Tornuk et plus élevée (44 %) que celle rapportée par Cheaib et al. dans le marc d’abricot. Dans certaines autres études, l’activité antioxydante des extraits de graines d’abricot sucré et d’abricot amer a été rapportée respectivement à 87,7 % et 20 %. Différents cultivars d’abricot pakistanais ont été analysés pour leur activité de piégeage des radicaux et se sont situés dans la fourchette de 55 % à 83 % et de 45 % à 90 %.
Les illustrations FTIR des bandes et étirements sont utilisées pour étudier l’existence de liaisons chimiques. De nombreux produits chimiques, notamment des hydrocarbures et des groupes aromatiques, aliphatiques et cycliques, ont été détectés par la technique FTIR dans la BASKO. Les présents résultats concordent avec ceux qui ont clairement décrit des résultats similaires pour la pêche. Les recherches indiquent que l’amande d’abricot contient les groupes chimiques suivants : C=O, CH3, OH, C-O, CH et C-O-H. Des recherches récentes ont évalué la flexion et le balancement du CH, les vibrations d’éther et les vibrations de cycle aromatique aux pics de 756–569, 1196–1088 et 1742 cm⁻¹, respectivement. Le nitrile aliphatique, l’étirement C=C, l’étirement N-H, l’étirement P-CL, l’étirement C-C, le méthylène et l’amide secondaire ont été décrits précédemment et attribués à plusieurs pics dans l’amande d’abricot.
Selon la littérature, l’huile d’abricot contient beaucoup d’acides gras, d’aldéhydes, d’hydrocarbures, de cétones, de phénols, d’alcool et de produits chimiques aromatiques. Les présents résultats concordent avec ceux indiquant la présence d’acides organiques, d’acides gras, d’aldéhydes, de cycles benzéniques, de composés aromatiques, d’alcool, d’esters, de phénols et d’hydrocarbures dans l’amande d’abricot amer. La présence des acides gras concorde avec les études ayant indiqué l’acide butanoïque (acide gras saturé à chaîne courte), l’acide stéarique (acide gras saturé), l’acide palmitique (acide gras monoinsaturé oméga-6) et l’acide oléique (acide gras monoinsaturé oméga-9) dans l’abricot. D’autres acides gras tels que l’acide caproïque (acide gras saturé), l’acide valérique (acide gras à chaîne droite), l’acide stéarique, l’acide caprylique (acide gras saturé), l’acide palmitique, l’acide adipique (acide gras à chaîne moyenne) et l’acide oléique ont été rapportés par Kumar et al. dans la plante chaff flower. L’acide margarique (acide gras saturé cristallin) a été rapporté dans une étude récente de Moghadasian et al. dans le câprier iranien. Il a été rapporté que les abricots contiennent de l’acide fumarique, de l’acide quinoléinecarboxylique, de l’acide glutarique, des dérivés du silicium, de l’acide succinique et des dérivés de l’acide acétique. L’extrait d’abricot contient une variété de produits chimiques, notamment furane, furazano, alcool, phosphates, éthers, groupes amine, cétones, composés cycliques et acycliques, dérivés méthyle et éthyle, et de nombreux composés à cycle benzénique, selon une étude antérieure. La réduction du risque de cancer, de maladie d’Alzheimer, d’anomalies congénitales et des taux d’homocystéine sont tous des avantages de l’acide folique pour le cœur et le cerveau. Antérieurement, Prasad et Rao ont rapporté la présence d’acide sébacique dans l’huile de ricin, qui a des applications en cosmétique, aromathérapie, bougies et produits de peinture. La manifestation de plusieurs composés bénéfiques, dont acide benzoïque, acide propanoïque, acide propionique, acide fumarique, acide carboxylique, acide malonique, acide hexynoïque, acide butanoïque, furanone, acétamide, phénol, cyclohexane, plusieurs diones, pyrrole, sulfures, dérivés du benzène, dérivés éthyle et produits méthyle, aurait été trouvée dans les déchets d’huile d’olive. Récemment, il a été indiqué que l’acide salicylique, l’acide cinnamique et le carbamate, ainsi que leurs dérivés, sont des insecticides naturels. La niacine, également connue sous le nom d’acide nicotinique, est un type de vitamine du complexe B qui aide dans les troubles cardiaques et neurologiques, le diabète et les infections cutanées. L’huile gagne davantage en importance dans les industries alimentaire, cosmétique et médicinale grâce à la présence d’acides organiques, d’acides gras, de composés méthyle et éthyle, de conservateurs naturels, d’insecticides naturels, de composés antivieillissement et de vitamines. Parmi les conservateurs naturels figurent l’acide benzoïque, l’acide ascorbique, l’acide cinnamique, les sulfites, les benzoates, les phosphates et les propionates. Les huiles essentielles contiennent naturellement une large gamme de composés bénéfiques, tels que acides gras, dérivés d’hydrocarbures, cétones, dérivés du benzène, alcools, acides organiques, oxydes, aldéhydes, phénols et esters, et de tels composés sont largement utilisés en cosmétique parce qu’ils ne comportent aucun effet secondaire ; ont un arôme agréable, une activité antioxydante et une élasticité cutanée ; possèdent des propriétés antimicrobiennes et antivieillissement ; et peuvent donc traiter cicatrices, acné et vergetures. Les huiles essentielles ont connu un essor spectaculaire et sont devenues prééminentes, en particulier dans les industries du parfum et de la cosmétique.
L’abricot et sa graine sont une source peu coûteuse de nombreuses substances efficaces contre les bactéries résistantes à plusieurs médicaments. Nous avons constaté que la BASKO possède une activité remarquable contre un large éventail de bactéries à Gram positif et à Gram négatif ; toutefois, S. aureus et S. typhi figuraient parmi les plus sensibles à la BASKO, avec des zones d’inhibition allant de 25 ± 1,01 et 19,3 ± 2,51 mm, ce qui concorde avec d’autres études. La présente analyse est en rapport avec l’étude de Lee et al. ; ils ont rapporté une inhibition complète de la croissance de Salmonella typhimurium, S. aureus, E. coli, P. aeruginosa et S. typhi par l’huile essentielle d’abricot. Antérieurement, Gupta et al. ont indiqué que l’abricot s’était révélé exceptionnellement efficace contre Helicobacter pylori et Mycobacterium tuberculosis, respectivement.
La présente analyse concorde avec l’étude ayant rapporté des concentrations similaires pour S. aureus et E. coli. Les analyses de CMI et CMB concordent avec Abtahi, Ghazavi et Karimi, qui ont indiqué que l’extrait d’abricot amer s’était révélé le plus efficace contre S. aureus. Antérieurement, Rashid et al. ont rapporté qu’un extrait méthanolique d’abricot était actif contre divers Gram négatif (Enterobacter aerogenes, P. aeruginosa, Shigella dysenteriae, E. coli, S. typhi, K. pneumoniae) et Gram positif (Streptococcus pyogenes, Streptococcus faecalis, S. aureus, Micrococcus luteus et Corynebacterium diphtheriae).
Cette étude a révélé que la BASKO est puissante contre les isolats fongiques. La BASKO a montré une inhibition fongique d’A. flavus (90 ± 3 %), T. tonsurans (77,3 ± 2,08 %) et E. floccosum (76,6 ± 3,51 %). Les résultats de notre étude ressemblent à ceux de Hashemi et Raeisi, qui ont démontré que la gomme d’abricot était active contre une variété de champignons, dont Alternaria alternata, Fusarium oxysporum et A. flavus. Les huiles d’abricot se sont révélées efficaces contre Malassezia furfur et Candida albicans. Les abricots incluent un certain nombre de substances bioactives qui renforcent leur puissance contre les effets antifongiques.
L’activité antileishmanienne de cette étude concorde avec Shaheen et al., qui ont rapporté l’extrait de feuille d’abricot comme un puissant agent antileishmanien. Minaiyan et al. ont rapporté l’utilisation de l’abricot dans le traitement de nombreuses infections à protozoaires. L’abricot contient un certain nombre de phytochimiques (saponines, terpénoïdes, tanins, flavonoïdes, phénols, quinine, coumarines et alcaloïdes) qui sont responsables de ses propriétés médicinales. L’activité antiparasitaire des coumarines, flavonoïdes, composés phénoliques et alcaloïdes a été rapportée.
5. Conclusion
La présente étude conclut que l’huile d’amande d’abricot amer est une source importante de composants biologiquement importants. Elle contient des composés chimiques utiles qui possèdent plusieurs potentiels bénéfiques, tels que des activités antimicrobiennes contre un large éventail de bactéries et de champignons, ainsi que des activités antiparasitaire, antioxydante et anti-détérioration. Cette étude a révélé que cette huile a le potentiel d’être utilisée comme désinfectant, insecticide, conservateur, ingrédient cosmétique et agent antimicrobien. L’huile montre une bonne puissance contre une variété de champignons utilisés dans cette étude, confirmant ainsi son statut de bon agent conservateur alimentaire.